巴曲酶基因的合成及其表達產物的制備方法

文檔序號:76564
專利名稱:巴曲酶基因的合成及其表達產物的制備方法
技術領域
本發明是有關采用DNA重組技術生產的一種源于巴西矛頭蝮蛇毒液中的巴曲酶 (Batroxobin)蛋白,其關鍵是巴曲酶基因的合成、克隆、表達、定向改造以及產物的發酵表達與分離純化。重組表達的巴曲酶可以作為止血藥的主要成份。 背景技術
巴曲酶(Batroxobin)最先是由奧地利維也納學者Von Klobusitzky于1936年從巴西矛頭蝮蛇(Bothrops atrox)蛇毒中分離、精制而得。它是一種單鏈糖蛋白,由17種氨基酸組成,總氨基酸數為231個,分子量39000 43000。至今,研究者從蝮蛇屬毒蛇的毒液中分離和純化出二十多種類凝血酶活性的絲氨酸蛋白酶類成份。這些絲氨酸蛋白酶類物質特異切割哺乳動物血漿中的纖維蛋白原,使之降解生成纖維蛋白I單體,進而交聯聚合成難溶性纖維蛋白,促進在出血部位的血栓形成和止血。
在克氏分離出巴曲酶后,研究者對其的理化性質以及臨床應用進行了深入的研究。巴曲酶使纖維蛋白原(Fg)在Aa鏈上的Argl6-Glyl7鍵處降解,釋出纖維蛋白肽 A(FPA)而生成可溶性的纖維蛋白I單體(FIm),在此酶的持續作用下,FLii在血管破損口處聚合成纖維蛋白I多聚體(FIp),FIp能促進血管破損處的血小板聚集、加速血小板止血栓的形成,從而促進血管破損處的初期止血效應。FIp在正常血管內不會使血小板聚集,卻易被纖溶酶降解成不凝的纖維蛋白降解產物(FDP),FDP可迅速被體內單核巨噬細胞系統吞噬、代謝,因而巴曲酶的止血作用僅發生于血管破損的出血部位。瑞士素高公司開發的立芷雪(注冊商品名R印tilase),其主要成份為巴曲酶,經過數十年的研究和臨床應用,證明該藥具有很好的止血功效,適用于防治各種原因引起的出血,如外科手術出血,上消化道、肺、 腎、癌腫、肝病出血,鼻出血,視網膜出血,婦科出血,新生兒出血等均可使用,療效優于傳統止血藥。
另外,在使用較大劑量的時候,巴曲酶通過降低血液中纖維蛋白原的濃度,改變血液流變學的降低血粘度、抑制紅細胞聚集、抑制紅細胞沉降、增強紅細胞的血管通透性及變形能力,使血液流動性增強,防止血栓形成。由日本開發的巴曲酶(東菱克栓酶),在臨床降纖應用方面顯示了較好的療效。
由深圳市健安醫藥公司總代理,瑞士素高公司生產的立芷雪(曾用名立止血, 注冊商品名R印tilase),該藥為巴曲酶與少量凝血因子X激活物的混合物,其主要成份巴曲酶從巴西矛頭蛇毒液中提取,1992年被批準進入我國,1995年以INN名“巴曲酶 Batroxobin”列入我國基本藥物名錄第2版。
國內巴曲酶產品主要有蓬萊諾康藥業有限公司生產的“巴曲亭”(注射用血凝酶),與“立芷雪”的結構和來源相同,于2001年上市銷售。目前,“巴曲亭”市場份額已占據國內巴曲酶產品的頭把交椅。
成熟的巴曲酶分子是由231個氨基酸殘基組成的單鏈蛋白,理論計算出其分子量為25. 5KD,等電點為7.39,國外從Bothrops atrox毒液中提取的巴曲酶,其實際分子量為42KD,這種分子量的偏差是由于糖基化修飾的緣故。巴曲酶蛋白質的一級結構中,有兩個N-糖基化位點=Asn146-Asn147-Thr148和Asn225-Lys226-Thr228 tl此夕卜,巴曲酶分子中含有 12個半胱氨酸,根據已知的絲氨酸蛋白酶類分子的研究結果,日本學者Itoh N等推測這 12 個半胱氨酸可能形成CyS7-CyS139、Cys26-Cys42, Cys74-Cys230, Cys118-Cys184, Cys150-Cys168, Cys174-Cys199六個分子內二硫鍵。
目前,已上市的巴曲酶產品均是從蛇毒液中提取,受到蝮蛇蛇毒液來源的限制,存在蛇毒病原微生物和神經毒劑污染的可能性,同時存在價格過高的缺點,因此我們設想采用基因工程的方法大量生產重組巴曲酶,以滿足臨床應用的需要,為患者減輕經濟負擔。
從克氏分離出巴曲酶至今,研究者對其有了比較深入的了解,但對其生物學方面的研究進展緩慢。日本學者Itoh N等分別在1987和1988年完成了對巴曲酶(Batroxobin) cDNA 和基因組 DNA 測序工作(Itoh N et al J Biol Chem. 1987Mar 5 ;262 (7) :3132-5 ; J Biol Chem. 1988Jun5 ;263 (16) :76沘_31)。1991 年,日本科學家 Maeda 等首次利用重組 DNA 技術,在大腸桿菌中以融合表達的方式,獲得重組巴曲酶的包涵體形式(Maeda M et al. J Biochem. 1991Apr ; 109 (4) :632-7.)。上海萬興公司在對巴曲酶蛋白的實際研究中發現,無論采用融合(同GST,Trx或Nus融合)或是非融合表達(N端多一個蛋氨酸)巴曲酶蛋白, 所得到的都是不溶性、無活性的包涵體,雖然表達量可以達到比較高的水平(約占菌體總蛋白的20-30% )。將表達載體轉入Novagen公司新推出的適合表達多二硫鍵蛋白的宿主菌AD494和Origami中也無濟于事。這種包涵體經變性-復性過程后,得到的可溶性蛋白并沒有檢測到任何活性(上海萬興生物制藥公司,授權公開號CN 100335622C)。
2002年,楊青等報道長白山白眉蝮蛇類凝血酶Gussruobin和Gloshedobin在畢赤酵母中獲得表達(楊青等.生物化學與生物物理學報.2002,34(1) :6-10)。2004年,You W K等人采用畢赤酵母表達B. atrox. moojuni來源的巴曲酶,具有與天然巴曲酶相同的生物學活性,純化后產量達到 6. 95 μ g/ml (You W K et al. FEBS Lett. 2004Jul 30 ;571 (1-3) 67-73.)。2004年,上海萬興公司黃秀東等(授權公開號CN 100335622C)采用畢赤酵母表達B. atrox. moojuni來源的巴曲酶,純化后產量達到20KU/ml。2007年,李招發等采用畢赤酵母表達巴曲酶,產量可達10mg/L (李招發等.生物工程學報,2007 ;23 (3) :483-486)。
采用基因工程的手段來生產富含多對二硫鍵和糖基化修飾的蛋白一直是一個技術難題,尤其是生產像巴曲酶這種含有六對二硫鍵的絲氨酸蛋白酶類分子。這是因為二硫鍵錯配率較高,在原核表達系統中得到的大多是包涵體形式,活性較低或幾乎沒有活性,不具備實際生產意義。真核表達系統(酵母、CHO細胞等)能保證較高的二硫鍵配對正確,對表達蛋白進行翻譯后修飾,保證表達產物的生物活性。

發明內容
本發明的目的在于提供一種定向突變的巴曲酶與專用編碼基因,它能夠通過分泌表達的方式進行大量生產,且具有較高的生物學活性。
包括以下幾個步驟
(1)巴曲酶基因的合成根據Genebank中公開的巴西矛頭蝮蛇毒液中的巴曲酶的核酸序列(X12747)(序列表序列1,簡稱SEQ-1)和氨基酸序列(序列表序列2,簡稱SEQ-2), 選擇畢赤酵母偏好的密碼子,人工合成巴曲酶的基因序列3 (序列表序列3,簡稱SEQ-3);同時,將SEQ-3中編碼的第41位的His和第178位的Ser突變為Glu,人工合成巴曲酶基因序列4 (簡稱SEQ-4),編碼的氨基酸序列為序列表中序列5 (簡稱SEQ-5)。[0017](2)表達載體的構建在巴曲酶基因序列SEQ-3和SEQ-4的5’端加入Bio I位點,在Β ο I位點和巴曲酶基因序列間加入KEX2蛋白酶酶切位點Lys-Arg對應的密碼子 AAAAGA,確保巴曲酶蛋白分泌到發酵液中時能夠切除α-信號肽,在3’端加入TGA終止密碼子以及Xba I位點,將DNA片段和pPICZ α A載體經Xho I與Xba I雙酶切、電泳回收、連接,構建表達載體pPICZ α A-bat (插入序列對應SEQD和pPICZ α A-bat_m(插入序列對應 SEQ-4)。
(3)巴曲酶表達菌株用Sac I或BstX I線性化pPICZ α A-bat和 pPICZ α A-bat-m,電轉至X-33或GSl 15感受態中,根據hvitrogen手冊進行單克隆的鑒定和高表達菌株的篩選。
(4)巴曲酶工程菌的發酵所述編碼基因電轉至畢赤酵母菌發酵表達的優選方法為16L發酵罐體系中,30°C,pH4. 0_6. 0,在基礎培養基中用葡萄糖代替甘油發酵16-1 后,按0. 6ml/min流加20%甘油約100ml,饑餓0. 5_lh,加入IOg玉米蛋白粉或蕎麥蛋白, 按lml/min加入含有體積PTMl的甲醇誘導90_%h ;所述基礎培養基為葡萄糖45g/L, K2SO417. 5g/L, MgS0414g/L, KOH 3. 2g/L, CaSO4O. 8g/L, PTMl 3ml/L。
(5)巴曲酶蛋白的表達純化發酵上清經PALL CentramateTM超濾系統,膜包選擇為漲,超濾系統進口壓力、出口壓力分別為10psi、5psi,流速為180ml/min。對發酵上清液采用等體積超濾,即超濾至原來體積1/4-1/5時,補加0. 1-0. 3M NaCl緩沖液,pH5. 0。預處理的巴曲酶上清液,先進行陽離子交換層析(Capto S),再經過陰離子交換層析(Capto Q), 最后再進行凝膠過濾層析(S^hacryl S-100)制備出巴曲酶純品。
本發明選擇畢赤酵母偏好密碼子,人工合成了巴曲酶全長基因序列,將該基因構建到畢赤酵母表達載體pPICZ α A上進行分泌表達,成功的表達出具有較高生物學活性的巴西矛頭蝮蛇巴曲酶。通過優化發酵過程中的一系列條件,如先期基礎培養基中加入葡萄糖作為碳源,再補加甘油進行饑餓,同時加入一定量的玉米或蕎麥蛋白,充當酶解底物,減少巴曲酶在發酵上清中的降解。通過優化純化參數與選擇最適的介質材料,純化后巴曲酶產量達到18mg/ml,超過了其他已發表和報道的表達水平,適合規?;a。突變后的基因表達量未見提高,但比活性由1800KU/mg上升到2700KU/mg,比活提高了 50%。
巴曲酶的三維結構模型未見報道,在絲氨酸蛋白酶屬種研究者通過X晶體衍射得到了蛇毒纖溶酶原激活劑(TSV-PA)的三維結構,其功能與巴曲酶類似,一級結構與巴曲酶相似性達到75%。在對巴曲酶氨基酸序列進行突變改造的過程中,我們用蛋白質同源模建在線程序SWISS-MODEL和同源模建軟件Modeller 9V6,以TSV-PA的X衍射結構作為巴曲酶的三維結構模型的模板,預測巴曲酶的三維結構。在巴曲酶同源建模所得三維結構的基礎上,依據巴曲酶底物-纖維蛋白原的空間結構,尋找底物結合可能的活性口袋,用計算機模擬其與底物纖維蛋白原的對接,預測巴曲酶在催化反應過程的關鍵氨基酸殘基為第41 位的 His 和第 178 位的 kr,與 Itoh N 等報道一致(ItohN et al J Biol Chem. 1987Mar 5;262(7) :3132- 。酶的活性部位是它結合底物和將底物轉化為產物的區域,通常是整個酶分子相當小的一部分,它是由在線性多肽鏈中可能相隔很遠的氨基酸殘基形成的三維實體?;钚圆课煌ǔT诿傅谋砻婵障痘蛄芽p處,形成促進底物結合的優越的非極性環境。在活性部位,底物被多重的弱的作用力結合(靜電相互作用、氫鍵、范德華力、疏水相互作用), 將第41位的His和第178位的Ser突變為Glu,增強活性中心的負電勢區域的負電勢,進而增強巴曲酶與底物纖維蛋白原結合時的靜電相互作用,提高巴曲酶與底物的親和力,從而提高巴曲酶的酶活。


圖1 巴曲酶基因重疊PCR-酶切合成示意圖
圖2 基礎培養基及部分條件優化前后,牛纖維蛋白原凝結速率(1/凝結所需時間)對比。
圖3 巴曲酶蛋白的SDS-PAGE電泳圖
M.蛋白Markeranvitrogen) ;1.轉化的空載體誘導;2.轉入巴曲酶基因陽性克隆誘導。 具體實施方式
一、重組巴曲酶表達載體pPICZ a A_bat和pPICZ α A-bat-m的構建
1.重組巴曲酶基因的人工合成
根據Genebank中公開的巴西矛頭蝮蛇毒液中的巴曲酶的核酸序列(X12747)和氨基酸序列,選擇畢赤酵母偏好的密碼子,人工合成巴曲酶的全長基因序列(序列表中SEQ-3 的核苷酸序列),用蛋白質同源模建在線程序SWISS-MODEL和同源模建軟件Modeller 9V6, 以TSV-PA的X衍射結構作為巴曲酶的三維結構模型的模板,預測巴曲酶的三維結構。在巴曲酶同源建模所得三維結構的基礎上,依據巴曲酶底物-纖維蛋白原的空間結構,尋找底物結合可能的活性口袋,用計算機模擬其與底物纖維蛋白原的對接,預測巴曲酶酶與催化反應過程的關鍵氨基酸殘基為第41位的His和第178位的kr,并將二者突變為Glu,基因序列為SEQ-4。
基因序列的全合成采用重疊PCR的方法。利用DNAMAN分析序列SEQ-3和SEQ-4 的酶切位點,找到2個天然的酶切位點AclI (AA/CGTT) ,DraIII (CACNNN/GTG)將其分割為3 段,即BSl (254bp)、BS2 (187bp)、BS3 (287bp)。各大段再設計為數個60_68bp的寡核苷酸片段進行合成,每段寡核苷酸片段相互有18_20bp的重疊堿基。對BS1、BS2、BS3分別設計一對接頭引物(引物兩端分別帶有上述的天然的酶切位點和保護堿基)。BSl與BS2用AclI 酶切后連接,再用DraIII酶切與BS3連接得全長基因片段(見圖1)。巴曲酶基因序列的 5’端帶有Β ο I位點和KEX2蛋白酶酶切位點Lys-Arg對應的密碼子AAAAGA,3’端引物加入TGA終止密碼子以及Xba I位點。
在巴曲酶基因序列SEQ-3和SEQ-4的5,端添加限制性內切酶Bio I位點,在Bio I位點和巴曲酶基因序列間加入KEX2蛋白酶酶切位點Lys-Arg對應的密碼子AAAAGA,確保巴曲酶蛋白分泌到發酵液中時能夠切除α-信號肽,同時使工程菌表達的巴曲酶具有同蛇毒中提取的巴曲酶蛋白具有一樣的N-端氨基酸序列。在3’端加入TGA終止密碼子以及 Xba I位點,將DNA片段和pPICZ α A載體經Bio I與)(ba I雙酶切、電泳回收、連接,構建表達載體pPICZ α A-bat和pPICZ α A-bat-m。優化的重組巴曲酶序列與Genebank Accession Number為X12747和其他合成的巴曲酶基因核苷酸序列均超過10%的差異。
將表達載體pPICZ α A_bat和pPICZ α A-bat-m分別轉化至大腸桿菌T0P10F,中,在含有25ng/ μ 1的LLB平板上進行培養約16h,挑取單菌落,在含有25ng/ μ 1的LLB液體培養基中培養,利用5’ AOXl與3’ AOXl引物進行PCR鑒定,再提取質粒,經Xho I與)(ba I雙酶切出含有目的基因大小的片段,鑒定單菌落中為陽性克隆,測序結果與目的基因序列一致。[0035]二、畢赤酵母GS115 Mab或X-33生產重組巴曲酶
1. pPICZa A_bat 和 pPICZ α A-bat-m 高表達菌株的篩選
將pPICZ α A-bat 和 pPICZ α A-bat-m 用 Sac I 或 BstX I 線性化,按照 hvitrogen 公司fes於elect Pichia Expression Kit中的方法制備酵母宿主菌感受態,并電轉至畢赤酵母宿主菌GSl 15 Mab或者X-33中,涂布于含有IOOng/μ 1 kocin抗生素的YPDS平板上,30°C下放置3-4天長出單菌落。挑選大而飽滿的單菌落,用5’ AOXl與3’ AOXl引物進行 PCR 鑒定。20 μ IPCR 反應體系為5' AOXl (10 μ Μ)與 3,AOXl (10 μ Μ)引物各 0.5 μ 1, dNTP(各 2· 5Μπι)2μ 1,10*Taq buffer 2 μ 1,Taq DNA polymerase (2. 5U/ μ 1) 0. 5 μ 1, ddH20 14. 5 μ 1。PCR 反應程序為95°C,8min ;95°C、lmin,55°C、lmin,72°C、lmin,30 個循環;72°C IOmin0根據hvitrogen手冊中,pPICZ α A等載體整合到酵母基因組的原理, 如果pPICZ α A-bat和pPICZ α A-bat-m插入到野生型GSl 15 Mab或者X-33自身醇氧化酶基因5,AOXl或3,AOXl中,會形成Mut+,即甲醇利用正常表型;如果pPICZ α A_bat和 pPICZ α A-bat-m替代野生型GSl 15 Mab或者X_33自身醇氧化酶基因,會形成Muts,即甲醇利用慢表型。2200bp條帶為野生型GS115 Mab或者X-33自身醇氧化酶基因的PCR產物,1300bp左右條帶為插入的載體的PCR產物,即Mut+有2200bp和1300bp左右的條帶, Muts僅有1300bp左右的條帶。
對單克隆菌株進行蛋白表達酶活鑒定,是篩選高表達菌株最直接有效地方式。將 PCR驗證含有pPICZ α A-bat或pPICZ α A-bat-m的陽性克隆菌株分別在BMGY(1 % Yeast extract,2 % peptone,IOOmM potassium phosphate, pH 6.0,1.34 % YNB,4x 10-5 % biotin,4x 10-5% biotin) 30°C過夜培養,接種至含有50ml BMMY培養基的500ml錐形瓶中,0D600約為1-1. 2,30°C培養,每隔M小時,補加0. 75%體積的甲醇誘導90小時。巴曲酶上清的測活,參照從蛇毒液中提取的巴曲酶的測活方法,用加入了抗凝劑枸櫞酸鈉的人標準血漿對發酵上清中表達出的酶活性(表達量)進行定性。因為巴曲酶的作用底物為纖維蛋白原,可以用0.4%的牛纖維蛋白原(Tris-HCl pH7.4,0. 15M NaCl)進行巴曲酶活性(表達量)的相對定量。具體方法為37°C下,將100μ1發酵上清加入到300μ1含 0. 4%的牛纖維蛋白原(Tris-HCl pH7. 4,0. 15MNaCl)溶液中,混勻后,觀察凝結所需要的時間。分別篩選了 500個pPICZ α A-bat或pPICZ α A-bat-m,巴曲酶活性(表達量)分別為 5mins_25mins,3mins_20minso
2.巴曲酶的發酵生產
因巴曲酶一級結構中有多個堿性蛋白聚集區,畢赤酵母分泌的重組巴曲酶在發酵液上清中易發生降解。我們通過優化了發酵基礎培養基的成份,前期以葡萄糖代替甘油,使菌株快速生長約16-1 ,再用甘油進行饑餓lh,以及在發酵過程中添加一些蛋白胨如玉米和蕎麥蛋白,但不局限于這些蛋白,充當酶解底物,減少巴曲酶蛋白的降解。同時,在流加甲醇的過程中補加體積PTMl的甲醇誘導。與未優化條件前相比,巴曲酶的產量有了較明顯的上升。
具體方法為以篩選到的含有pPICZ α A-bat-m酶活為!Bmins的陽性克隆為例,上 16L發酵罐進行發酵。種子液接種量為6%-10%,轉接至裝有10L基礎培養基(葡萄糖 45g/L, K2S0417. 5g/L,MgS0414g/L, KOH 3. 2g/L,CaSO4O. 8g/L,PTMl 3ml/L)的 16L 發酵罐中, 30°C,pH為5. 0,發酵16-1 ,待溶氧從接近0%上升到70-80%,按2ml/min加入20%甘油約100ml,饑餓30-60mins,流加含體積PTMl的甲醇lml/min誘導培養96h,中間加入約 IOg玉米蛋白粉或蕎麥蛋白,充當酶解底物,每隔12h取發酵液測濕重和發酵上清,用0. 4% 的牛纖維蛋白原(Tris-HCl ρΗ7·4,0·15Μ NaCl)進行巴曲酶活性(表達量)的相對定量。 具體方法為,37°C下,將100 μ 1發酵上清加入到300 μ 1含0.4%的牛纖維蛋白原(Tris-HCl ρΗ7.4,0. 15Μ NaCl)溶液中,混勻后,觀察凝結所需要的時間。
計算牛纖維蛋白原凝結速率(1/凝結所需時間),實驗結果如圖2所示基礎培養基中更換碳源,補加甘油進行饑餓,流加甲醇的過程中補加體積PTMl的甲醇誘導,以及在發酵過程中添加一些蛋白胨如玉米和蕎麥蛋白,在這種優化條件下牛纖維蛋白原凝結速率最高。PTMl微量元素的流加使酵母的代謝較為旺盛,表達的巴曲酶在量和活性方面均有所提高,同時,補加的蛋白胨充當了酶解底物,減少了巴曲酶蛋白的降解。以篩選到的含有pPICZaA-bat-m酶活為;3mins的陽性克隆為例,上16L發酵罐進行發酵。種子液接種量為6% -10%,轉接至裝有IOL基礎培養基(葡萄糖40g/L,K2S04 18g/L,MgS04 15g/L, K0H4. 13g/L, CaS04 0. 9g/L, PTMl 30ml)的 16L 發酵罐中,30°C,pH 為 5. 0,發酵 16_18h,待溶氧從接近0%上升到70-80%,按anl/min加入20%甘油約100ml,饑餓30_60mins,流加含體積PTMl的甲醇lml/min誘導培養96h,中間加入約IOg玉米蛋白粉或蕎麥蛋白, 0D600約為400,按所述方法測得的酶活(表達量)為20secs。
三、巴曲酶的純化與活性鑒定
0D600約為400發酵上清經PALL CentramateTM超濾系統,膜包選擇為漲,超濾系統進口壓力、出口壓力分別為10psi、5psi,流速為ISOml/min。對發酵上清液采用等體積超濾,即超濾至原來體積1/4-1/5時,補加0. 1-0. 3M Nacl緩沖液,pH5. O。預處理的巴曲酶上清液,先經過IOmM PBS (ρΗ5. 0)平衡過的陽離子交換層析(Capto S),用含0. 5-1. OM的 NaCl IOmMPBS (ρΗ5. 0)梯度洗脫,收集蛋白峰。將上步收集到的活性峰稀釋調節為50mM的 Tris-HCl緩沖,pH為9. 0,再上經過50mM的Tris-HCl (ρΗ9. 0)緩沖平衡過的陰離子交換層析(CaptoQ),采用Tris-HCl pH9. 0-4. O梯度洗脫的方式,最后使目的蛋白在IOmMTris-HCl PH 4. 5緩沖液中,收集活性峰,最后再進行凝膠過濾層析(S^hacryl S-100),脫鹽,收集活性峰,得到的純度達98%以上。結果表明重組巴曲酶的產量達到18mg/L。凍干,_70°C保存。巴曲酶蛋白的SDS-PAGE電泳圖見圖3 :M.蛋白Marker (Invitrogen) ;1.轉化的空載體誘導;2.轉入巴曲酶基因陽性克隆誘導。
用含抗凝劑枸櫞酸鈉的人標準血漿進行巴曲酶活性檢測,具體方法為37°C下,將 100 μ 1的發酵上清加入到300μ 1的含抗凝劑枸櫞酸鈉的人標準血漿中,混勻后,觀察凝結所需的時間與相同條件下巴曲酶標準品相比較。1克氏單位(κυ,1個克氏單位指在37°C的試管內,使Iml標準人血漿在60士20秒內凝固的立止血數量)=0.04NIH凝血酶單位= 1/4巴曲酶單位(BU) = 0. 3國際單位(IU)的凝血酶。1巴曲酶單位(BU) = 0. 17NIH凝血酶單位(NIH Unit,INIH凝血酶單位定為在觀士 1. 0°C條件下,15士0. 5秒內凝結Iml人標準纖維蛋白原溶液的凝血酶量)。
用牛纖維蛋白原進行巴曲酶活性的檢測,具體方法為,37°C下,將ΙΟΟμ 1發酵上清加入到300μ 1含0. 4%的牛纖維蛋白原(Tris-HCl ρΗ7· 4,0. 15Μ NaCl)溶液中,混勻后, 觀察凝結所需要的時間。
用鹽酸苯酰-L-精氨酰-P-硝基苯胺(L-BAPA)進行巴曲酶定性檢測,具體方法為取發酵上清液0. anl,加人鹽酸苯酰-L-精氨酰-P-硝基苯胺(L-BAPA)溶液0. 2ml, 37°C 加熱30分鐘,溶液呈黃色。
四、氨基酸突變對巴曲酶活性的影響
重組巴曲酶表達載體pPICZ α A_bat和pPICZ α A-bat-m的構建見具體實施一,區別在于pPICZ α A-bat插入的目的基因序列編碼的第41位的為His和第178位的為Ser, pPICZ α A-bat-m插入的目的基因序列編碼的第41位第178位均為Glu。兩者具體的發酵生產、純化與活性鑒定均見具體實施方式
。
采用從蛇毒中提取巴曲酶活性檢測方法進行重組巴曲酶體外凝血試驗,具體實驗方法為稱取巴曲酶標準品(英國國家生物制品檢定所,NIBSC)、未突變氨基酸的基因工程巴曲酶(rBat)、突變氨基酸的基因工程巴曲酶(rBat-m)各0. lmg,溶于20ml水中,37°C下, 將100 μ 1上述配制的巴曲酶溶液加入到300 μ 1的含抗凝劑枸櫞酸鈉的人標準血漿中,每種巴曲酶溶液測定3管,混勻后,于Imin后觀察凝結所需的時間,每種巴曲酶溶液的3管初凝時間誤差應小于20秒。若初凝時間小于40秒,則適當稀釋發酵液上清,減少因凝結快速而帶來的誤差過高,與相同條件下巴曲酶標準品相比較。
結果見表1:
表1巴曲酶體外凝血活性測定結果
權利要求
1.一種制備巴曲酶的專用基因,其序列為序列表中序列3。
2.一種制備巴曲酶的專用基因,其序列為序列表中序列4。
3.權利要求
1或2所述的基因在構建表達菌株中的應用,其特征在于構建表達載體時在5’端加入Bio I位點,在Β ο I位點和巴曲酶基因序列間加入KEX2蛋白酶酶切位點 Lys-Arg,對應的密碼子為AAAAGA,在3,端加入TGA終止密碼子以及Xba I位點,將DNA片段和PPICZaA載體經B10 I與)(ba I雙酶切、電泳回收、連接、電轉至宿主菌,所述宿主菌為畢赤酵母。
4.一種發酵制備巴曲酶的方法,其特征在于將權利要求
1或2所述編碼基因按照權利要求
3所述應用方法電轉至畢赤酵母菌中并發酵表達,發酵表達方法為16L發酵罐體系中,30°C,pH4. 0-6. 0,在基礎培養基中用葡萄糖代替甘油發酵16-1 后,按0. 6ml/min流加20%甘油約100ml,饑餓0. 5-lh,加入IOg玉米蛋白粉或蕎麥蛋白,按lml/min加入含有 1 %體積PTMl的甲醇誘導90-%h ;所述基礎培養基為葡萄糖45g/L,K2SO4 17. 5g/L,MgSO4 14g/L, KOH 3. 2g/L, CaSO4 0. 8g/L, PTMl 3ml/L。
專利摘要
本發明是有關采用DNA重組技術生產的一種源于巴西矛頭蝮蛇毒液中的巴曲酶(Batroxobin)蛋白。該巴曲酶蛋白的編碼基因,具有下述的核苷酸序列之一1)序列表中序列3;2)序列表中序列4,具編碼的巴曲酶氨基酸序列相對于天然的巴曲酶氨基酸序列,第41位的His和第178位的Ser突變為Glu。利用本發明優化后的發酵與純化方法,以分泌表達的方式成功地表達出高生物活性的巴曲酶蛋白。重組表達的巴曲酶可以作為止血藥的主要成份。
文檔編號C12N9/64GKCN101705240 B發布類型授權 專利申請號CN 200910089534
公開日2012年7月4日 申請日期2009年7月23日
發明者唐先兵, 張同 申請人:揚子江藥業集團北京海燕藥業有限公司導出引文BiBTeX, EndNote, RefMan專利引用 (3),
再多了解一些
網友詢問留言 已有0條留言
  • 還沒有人留言評論。精彩留言會獲得點贊!
1
做爱视频